ЖАСУШАДАН ТЫС НЕЙТРОФИЛДІ ТҰЗАҚТАР: ТҮЗІЛУ МЕХАНИЗМДЕРІ
Аннотация
Жасушадан тыс нейтрофильді тұзақтар иммунитетке иммундық жүйенің өзіндік жаңа парадигмасын көрсетеді. NET деконденсирлен ядролық ДНК мен байланысқан гистондардың қосындысынан тұратын белсендірілген антимикробты жіпшелерден құралып, жасушадан тыс ортаға лақтырылады. Осы ДНК торшаларына түскен микроорганизмдер антимикробты пептидтермен әсерінен өлімге ұшырайды. нейтрофилді тұзақтардың екі жақтық қасиеті анықталды: бір жағынан қорғаныштық қызмет атқарып, екінші жағынан, керісінше, тіндік зақымдануға әкеледі. Осыған орай, әр түрлі патологиялық жағдайлардың ағымы мен нәтижесін анықтауда жасушадан тыс нейтрофилді тұзақтардың түзілуін бағалау сөзсіз маңызды және өзекті.
Авторлар туралы
М. .. Маратқызы
«Қарағанды медицина университеті» Коммерциялық емес акционерлік қоғамы
Қазақстан
Қазақстан
А. Е. Косыбаева
«Қарағанды медицина университеті» Коммерциялық емес акционерлік қоғамы
Қазақстан
Қазақстан
Әдебиет тізімі
1. Андрюков Б. Г. Нейтрофильная защитная стратегия против патогенных бактерий /Б. Г. Андрюков, Л. М. Сомова. Л. М. Дробот //Здоровье. Медицинская экология. Наука. - 2017. -№1. - С. 4-18.
2. Коротина О. Л. Нейтрофильные внеклеточные ловушки: механизмы образования, функции /О. Л. Коротина, И. И. Генералов // Иммунология, аллергология, инфектология. - 2012. - №4. - С. 23-32.
3. Коротина О. Л. Нейтрофильные внеклеточные ловушки: механизмы образования, функции /О. Л. Коротина, И. И. Генералов // Иммунология, аллергология, инфектология. - 2012. - №4. - С. 23-32.
4. Косыбаева А. Е. Современное представление о механизмах образования нейтрофильных внеклеточных ловушек /А. Е. Косыбаева, М. М. Мараткызы, Э. В. Итаева //Междунар. студ. науч. вестник. - 2019. - №1. - С. 56-61.
5. Borregaard N. Neutrophils, from marrow to microbes // Immunity. - 2010. - №33. -Рр. 657-670.
6. Branzk N. Molecular mechanisms regulating NETosis in infection and disease /N. Branzk, V. Papayannopoulos //Semin Immunopathol. - 2013. - V. 35(4). - P. 513-530.
7. Brinkmann V/ Neutrophil extracelllulartraps kill bacteria /V. Brinkmann, U. Rechard, C. Goosmann //Science. - 2004. - №303. - Рр. 1532-1535.
8. Brinkmann V. Automatic quantification in vitro NET formation /V. Brinkmann, C. Goosmann, A. Zychlinsky //Frontiers in Immunology. - 2013. - №3. - Рр. 413-418.
9. Brinkmann V. Beneficial suicide: why neutrophils die to, make NETs /V. Brinkmann, A. Zychlinsky //NatureRev. - 2007. - №5. - Рр. 577-582.
10. Brinkmann V. Neutrophil Extracellular Traps in the Second Decade //J. Innate Immun. -2018. - №10. - С. 414-421.
11. Brinkmann V. Neutrophil extracellular traps: how to generate and visualize them /V. Brinkmann, B. Laube, U. Abu Abed //Journ/ of Visualized experiments. - 2010. - V. 14. - Pp. 24-36.
12. Brinkmann V. Automatic quantification of in vitroNET formation /V. Brinkmann, C. Goosmann, L. I. Kuhn //Front. Immunol. - 2013. -V. 3. - P. 413.
13. Brinkmann V. Neutrophil extracellular traps: is immunity the second function of chromatin? /V. Brinkmann, A. Zychlinsky //J. Cell Biol. -2012. - №198. - Рр. 773-783.
14. Dwyer M. Cystic fibrosis sputum DNA has NETosis characteristics and neutrophil extracellular trap release is regulated by macrophage migration-inhibitory factor //J Innate Immun. - 2016. - Т. 6. - №6. - Рр. 765-779.
15. Fuchs H. J. Effect of Aerosolized Recombinant Human Dnase on Exacerbationsof Respiratory Symptoms and on Pulmonary Function in Patients with Cystic Fibrosis /H. J. Fuchs, D. S. Borowitz, D. H. Christiansen //New England Journal of Medicine. - 2014. - №331 (10). - Рр. 637-642.
16. Fuchs T. A. Novel cells death program leads to neutrophil extracelllular traps /T. A. Fuchs, U. Abed, C. J. Goosmann //Cell Biol. - 2017. - №176 (2). - Рр. 231-241.
17. Itagaki K. Mitochondrial DNA released by trauma induces neutrophil extracellular traps / K. Itagaki, E. Kaczmarek, Y. T. Lee //PLoS One. - 2015. - V. 10 (3). - Рр.10-11.
18. Kobayashi S. D. Neutrophils in the innate immune response /S. D. Kobayashi, J. M. Voyich, C. Burlak //Archivum Immunologiae et Therapiae Experimental. - 2005. - V. 4. - Pp. 17-53.
19. Lood C. Neutrophil extracellular traps enriched in oxidized mitochondrial DNA are interferogenic and contribute to lupus-like disease // Nat. Med. - 2016. - №22. - Рр. 146-153.
20. Mayadas T. N. The Multifaceted Functions of Neutrophils /T. N. Mayadas, X. Cullere, C. A. Lowell //Annu. Rev. Pathol. - 2014. - №9. -С. 181-218.
21. Pijanowski L. Carp neutrophilic granulocytes form extracellular traps via ROS-dependent and independent pathways /L. Golbach, E. Kolaczkowska, M. Scheer //Shellfish Immunol. - 2013. - V. 34(5). - Рр. 1244-1252.
22. Pilsczek F. H. A novel mechanism of rapid nuclear neutrophil extracellular trap formation in response to Staphylococcus aureus /F. H. Pilsczek, D. Salina, K. K. Poon //J. Immunol. -2012. №185. - Рр. 7413-7425.
23. Scapini P. The neutrophil as a cellular source of chemokines. Immunological /P. Scapini, J. A. Lapinet-Vera, S. Gasperini //Reviews. -2010. - №177. - Рр. 19-203.
24. Venizelos Papayannopoulos. Neutrophil extracellular traps in immunity and disease //Nature Reviews Immunology. - 2018. -№18. - Рр. 134-147.
25. Woodfin A. Recent developments and complexities in neutrophil transmigration /A. Woodfin, M. B. Voisin, S. Nourshargh //Curr. Opin. Hematol. - 2010. - №17. - Рр. 9-17
26. Yipp B. G. NETosis: how vital is it? /B. G. Yipp, P. Kubes //Blood. - 2013. - Т 22. -№16. - Рр. 2784-2794.
27. Yousefi S. Viable neutrophils release mitochondrial DNA to form neutrophil extracellular traps. /S. Yousefi, C. Mihalache, E. Kozlowski //Cell Death Differ. - 2009. - V. 16. - P. 1438-1444.
Рецензия
Дәйектеу үшін:
Маратқызы М..., Косыбаева А.Е. ЖАСУШАДАН ТЫС НЕЙТРОФИЛДІ ТҰЗАҚТАР: ТҮЗІЛУ МЕХАНИЗМДЕРІ. Медицина және экология. 2019;(4):19-23.
For citation:
Maratkyzy M..., Kosybayeva A.Ye. NEUTROPHIL EXTRACELLULAR TRAPS: FORMATION MECHANISMS. Medicine and ecology. 2019;(4):19-23. (In Russ.)
Қараулар: 212
Мақаланы эл. пошта арқылы жіберу 